Equipe Assemblages moléculaires et signalisation
CEA Saclay/Bât. 144
Tél : 01 69 08 67 17 / 01 69 08 96 79
raphael.guerois@cea.fr / françoise.ochsenbein@cea.fr
Elucider les bases moléculaires qui régissent l’assemblage dynamique des protéines en combinant des stratégies bioinformatiques et expérimentales.
Moyens humains
Raphaël GUEROIS, Chercheur
Françoise OCHSENBEIN, Chercheuse
Gwenaëlle MOAL-RAISIN,Technicienne
Jessica ANDREANI, Doctorante
Nicolas RICHET, Doctorant
Thèmes de recherche Notre équipe s’appuie sur un couplage fort entre des approches bioinformatiques et expérimentales pour élucider les bases moléculaires qui régissent l’assemblage dynamique des protéines. La majorité des voies de signalisation cellulaire repose sur la formation plus ou moins transitoire de contacts entre protéines en vue d’induire une réponse cellulaire spécifique. La caractérisation à haute résolution de la structure des complexes formés et la compréhension de leurs mécanismes d’assemblage constitue le premier volet de notre projet de recherche. La possibilité d’inhiber ces interactions par des composés exogènes représente un champ de recherche nouveau et fascinant. Dans cette optique, nous avons entrepris le design rationnel de composés qui inhibent la formation des assemblages protéiques activés suite à différents stress génotoxiques; Nos études sont actuellement ciblées sur des protéines chaperons dont la spécialité est de réguler le processus même de formation et de dissociation des complexes. Du fait de leurs positions centrales dans l’orchestration des assemblages protéiques, elles constituent des cibles d’étude privilégiées. Deux processus d’assemblage nous intéressent plus particulièrement ; l’un concerne l’assemblage précoce de la chromatine par le chaperon Asf1, l’autre concerne l’assemblage des complexes d’ubiquitination et de dégradation des protéines. Ces deux processus biologiques participent directement au maintient de l’intégrité du génome suite à différents types de stress, en particulier ceux induits par les rayonnements ionisants. L’exposition aux rayonnements naturels, à des stress oxydants endogènes ou à des radiations ionisantes déclenche des mécanismes biologiques visant à protéger le contenu du génome cellulaire. Ces mécanismes permettent la réparation des dommages subis par l’ADN et ainsi la restitution de la séquence d’ADN originelle. Lorsqu’ils sont défectueux surviennent de graves pathologies comme les cancers. La compréhension des cascades d’évènements élaborés par les organismes vivants afin de faire face aux effets toxiques des rayonnements constitue un domaine d’étude majeur pour le CEA. Dans ce contexte, nous collaborons activement avec plusieurs équipes de biologistes cellulaires et de généticiens au CEA et à l’extérieur de l’institut. Ces collaborations constituent des piliers essentiels pour nous permettre de disséquer l’influence des interactions étudiées à l’échelle atomique sur les phénotypes complexes observés à l’échelle d’une population cellulaire. Parmi ces collaborations, nous bénéficions depuis plusieurs années de liens privilégiés avec les équipes de Carl Mann, de Marie-Claude Marsolier-Kergoat, plus récemment de Ariel Prunell, et de Marc Lipinski et Vasily Ogryzko pour l’ensemble de nos activités ayant trait à la signalisation des dommages de l’ADN et à l’assemblage de la chromatine. Concernant la régulation de l’assemblage des complexes d’ubiquitination et de dégradation des protéines, nous travaillons en synergie avec l’équipe de Ken Shirasu au RIKEN Institute de Yokohama et plus récemment avec celle de Laurent Noël au CEA de Cadarache. La spécificité de notre approche est de coupler des stratégies prédictives basées sur le développement d’outils originaux en bioinformatique structurale (lien vers les outils web) et un vaste ensemble de techniques expérimentales. Parmi elles, citons la RMN, un large panel de méthodes biochimiques et biophysiques ainsi que la biologie moléculaire. Chaque sujet bénéficie de l’expertise des deux responsables de l’équipe. Raphaël Guerois est particulièrement impliqué dans les développements bioinformatiques. Il a initialement développé le programme FOLD‑X dans le laboratoire de Luis Serrano à l’EMBL de Heidelberg et s’est depuis spécialisé dans le développement d’outils de détection d’homologies lointaines, de prédiction de structure 3D ainsi que de prédiction et d’ingénierie des sites d’interaction entre protéines. Françoise Ochsenbein supervise l’ensemble des approches expérimentales, en particulier, la détermination des structures des protéines et de leurs complexes par RMN et par des techniques de biochimie. Son activité antérieure, concentrée sur le design de domaines d’annexine fonctionnels (3 brevets, création de la société Bionexis), est adaptée pour mener à bien nos projets structuraux aussi bien sur le plan de la compréhension fondamentale des mécanismes d’assemblages des protéines que pour permettre l’ingénierie de composés qui régulent ces interactions.

Mots-clés
Structure des protéines solubles, spectroscopie RMN, bioinformatique, modélisation, signalisation des dommages de l'ADN, interactions protéine-protéine
Publications
Jiao, Y., Seeger, K., Lautrette, A., Gaubert, A., Mousson, F., Guerois, R., Mann, C., and Ochsenbein, F. (2012). Surprising complexity of the Asf1 histone chaperone-Rad53 kinase interaction. Proc Natl Acad Sci U S A, (in press).
Faure G, Andreani J, Guerois R. (2012) InterEvol database: exploring the structure and evolution of protein complex interfaces. Nucleic Acids Res. 40,:D847-56.
Stuttmann J, Hubberten HM, Rietz S, Kaur J, Muskett P, Guerois R, Bednarek P, Hoefgen R, Parker JE. (2011). Perturbation of Arabidopsis amino acid metabolism causes incompatibility with the adapted biotrophic pathogen Hyaloperonospora arabidopsidis. Plant Cell . 23 (7):2788-803.
Ropars V, Drevet P, Legrand P, Baconnais S, Amram J, Faure G, Márquez JA, Piétrement O, Guerois R, Callebaut I, Le Cam E, Revy P, de Villartay JP, Charbonnier JB. (2011). Structural characterization of filaments formed by human Xrcc4-Cernunnos/XLF complex involved in nonhomologous DNA end-joining. Proc Natl Acad Sci U S A 108(31):12663-8.
García-Ortíz MV, Marsin S, Arana ME, Gasparutto D, Guérois R, Kunkel TA, Radicella JP. (2011). Unexpected role for Helicobacter pylori DNA polymerase I as a source of genetic variability. PLoS Genet 7(6):e1002152.
Martin G, Burke B, Thaï R, Dey AK, Combes O, Ramos OH, Heyd B, Geonnotti AR, Montefiori DC, Kan E, Lian Y, Sun Y, Abache T, Ulmer JB, Madaoui H, Guérois R, Barnett SW, Srivastava IK, Kessler P, Martin L. (2011). Stabilization of HIV-1 envelope in the CD4-bound conformation through specific cross-linking of a CD4 mimetic. J Biol Chem 286(24):21706-16.
Aucher W, Becker E, Ma E, Miron S, Martel A, Ochsenbein F, Marsolier-Kergoat MC, Guérois R. (2010) A strategy for interaction site prediction between phospho-binding modules and their partners identified from proteomic data. Mol Cell Proteomics. 9(12):2745-59.
Fourquet S, Guérois R, Biard D, Toledano MB. (2010) Activation of NRF2 by nitrosative agents and H2O2 involves KEAP1 disulfide formation. J Biol Chem. 285, 8463-71.
Kadota Y, Shirasu K, Guérois R. (2010). NLR sensors meet at the SGT1-HSP90 crossroad. Trends BiochemSci. 35, 199-207.
Lopes A, Amarir-Bouhram J, Faure G, Petit MA, Guérois R. (2010) Detection of novel recombinases in bacteriophage genomes unveils Rad52, Rad51 and Gp2.5 remote homologs. Nucleic Acids Res. 38, 3952-62.
Malivert L, Ropars V, Nunez M, Drevet P, Miron S, Faure G, Guérois R, Mornon JP, Revy P, Charbonnier JB, Callebaut I, de Villartay JP. (2010) Delineation of the Xrcc4-interacting region in the globular head domain of cernunnos/XLF. J Biol Chem. 285, 26475-83.
Marsin S, Lopes A, Mathieu A, Dizet E, Orillard E, Guérois R, Radicella JP. (2010) Genetic dissection of Helicobacter pylori AddAB role in homologous recombination. FEMS Microbiol Lett. (Sous Presse).
Mousseau G, Raffy Q, Thomas O P, Agez M, Thai R, Renault J P, Pin S, Ochsenbein F, Cintrat J C, Rousseau B. (2010). Footprinting of Protein Interactions by Tritium Labeling. Biochemistry. 49, 4297-4299.
Cariou B, Ouguerram K, Zaïr Y, Guerois R, Langhi C, Kourimate S, Benoit I, Le May C, Gayet C, Belabbas K, Dufernez F, Chétiveaux M, Tarugi P, Krempf M, Benlian P, Costet P. (2009) PCSK9 dominant negative mutant results in increased LDL catabolic rate and familial hypobetalipoproteinemia. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 29, 2191-7.
Le Tallec B, Barrault MB, Guérois R, Carré T, Peyroche A. (2009). Hsm3/S5b participates in the assembly pathway of the 19S regulatory particle of the proteasome. Mol Cell. 33, 389-399.
Stuttmann J, Lechner E, Guérois R, Parker JE, Nussaume L, Genschik P, Noël LD. (2009). COP9 signalosome- and 26S Proteasome-dependent regulation of SCFTIR1 accumulation in Arabidopsis. J Biol Chem. 284, 7920-2930.
Galvani A, Courbeyrette R, Agez M, Ochsenbein F, Mann C, Thuret JY. (2008). In vivo study of the nucleosome assembly functions of ASF1 histone chaperones in human cells. Mol Cell Biol. 28, 3672-85.
Kadota Y, Amigues B, Ducassou L, Madaoui H, Ochsenbein F, Guérois R and Shirasu K (2008) Structural and functional analysis of SGT1-HSP90 core complex required for innate immunity in plants. EMBO Reports. 9, 1209-1215.
Madaoui H, Guérois R (2008). Coevolution at protein complex interfaces can be detected by the complementarity trace with important impact for predictive docking. Proc Natl Acad Sci U S A. 105, 7708-13.
Marsin S, Mathieu A, Kortulewski T, Guérois R, and Radicella JP. (2008) Unveiling Novel RecO Distant Orthologues Involved In Homologous Recombination. PLoS Genetics, 4: e1000146.
Agez M, Chen J, Guérois R, van Heijenoort C, Thuret JY, Mann C, Ochsenbein F. (2007). Structure of the histone chaperone asf1 bound to the histone h3 C-terminal helix and functional insights Structure (Camb).15, 191-199.
Becker E, Cotillard A, Meyer V, Madaoui H, Guérois R (2007). HMM-Kalign : a tool for generating sub-optimal HMM alignments. Bioinformatics. 23, 3095-7.
Botër M, Amigues B, Peart J, Breuer C, Kadota Y, Casais C, Moore G, Kleanthous C, Ochsenbein F, Shirasu K, Guérois R. (2007).Structural and Functional Analysis of SGT1 Reveals That Its Interaction with HSP90 Is Required for the Accumulation of Rx, an R Protein Involved in Plant Immunity. Plant Cell. 19, 3791-804.
Guillemain G, Ma E, Mauger S, Miron S, Thai R, Guérois R, Ochsenbein F, Marsolier-Kergoat MC. (2007). Mechanisms of checkpoint kinase Rad53 inactivation after a double-strand break in Saccharomyces cerevisiae. Mol Cell Biol.27, 3378-3389.
Heise CT, Duff CS, Boter M, Casais C, Airey JE, Leech AP, Amigues B, Guérois R, Moore GR, Shirasu K, Kleanthous C. (2007). Biochemical Characterization of RAR1 Cysteine- and Histidine-Rich Domains (CHORDs): A Novel Class of Zinc-Dependent Protein-Protein Interaction Modules. Biochemistry.46, 1612-1623.
Mousson F, Ochsenbein F, Mann C. (2007). The histone chaperone Asf1 at the crossroads of chromatin and DNA checkpoint pathways. Chromosoma.116, 79-93.
Odaert B, Saida F, Aliprandi P, Durand S, Crechet JB, Guérois R, Laalami S, Uzan M, Bontems F. (2007). Structural and functional studies of RegB, a new member of a family of sequence-specific ribonucleases involved in mRNA inactivation on the ribosome. J Biol Chem.282, 2019-2028.
Le Tallec B, Barrault MB, Courbeyrette R, Guérois R, Marsolier-Kergoat MC, Peyroche A. (2007). 20S proteasome assembly is orchestrated by two distinct pairs of chaperones in yeast and in mammals. Mol Cell. 27, 660-74.
Becker E, Meyer V, Madaoui H, Guérois R. (2006). Detection of a tandem BRCT in Nbs1 and Xrs2 with functional implications in the DNA damage response. Bioinformatics.22, 1289-129.
Haubertin DY, Madaoui H, Sanson A, Guérois R, Orlowski S. (2006). Molecular dynamics simulations of E. coli MsbA transmembrane domain: formation of a semipore structure. Biophys J.91, 2517-2531.
Madaoui H, Becker E, Guérois R. (2006). Sequence search methods and scoring functions for the design of protein structures. Methods Mol Biol.340, 183-206.
Tresaugues L, Dehe PM, Guérois R, Rodriguez-Gil A, Varlet I, Salah P, Pamblanco M, Luciano P, Quevillon-Cheruel S, Sollier J, Leulliot N, Couprie J, Tordera V, Zinn-Justin S, Chavez S, van Tilbeurgh H, Geli V. (2006). Structural Characterization of Set1 RNA Recognition Motifs and their Role in Histone H3 Lysine 4 Methylation. J Mol Biol.359, 1170-1181.
Mousson F, Lautrette A, Thuret JY, Agez M, Courbeyrette R, Amigues B, Becker E, Neumann JM, Guérois R, Mann C, Ochsenbein F. (2005). Structural basis for the interaction of Asf1 with histone H3 and its functional implications Proc Natl Acad Sci U S A. 102, 5975-5980.
Charier G, Couprie J, Alpha-Bazin B, Meyer V, Quéméneur E, Guérois R, Callebaut I, Gilquin B, Zinn-Justin S. (2004). The Tudor tandem of 53BP1: a new structural motif involved in DNA and RG-rich peptide binding. Structure (Camb). 12, 1551-1562.
Mousson F, Couprie J, Thuret JY, Neumann JM, Mann C, Ochsenbein F. (2004). 1H, (13)C and (15)N Resonance Assignments of the Conserved Core of hAsf1 A. J Biomol NMR. 29, 413-414.
Leroy C, Lee SE, Vaze MB, Ochsenbein F, Guérois R, Haber JE, Marsolier-Kergoat MC. (2003). PP2C Phosphatases Ptc2 and Ptc3 Are Required for DNA Checkpoint Inactivation after a Double-Strand Break. Mol Cell. 11, 827-835.
Micheelsen MA, Rischel C, Borg J, Guérois R, Serrano L. (2003) Mean first-passage time analysis reveals rate-limiting steps, parallel pathways and dead ends in a simple model of protein folding. Europhys. Let. 61,561-66.
Barth P, Savarin P, Gilquin B, Lagoutte B, Ochsenbein F. (2002). Solution NMR Structure and Backbone Dynamics of the PsaE Subunit of Photosystem I from Synechocystis sp. PCC 6803 Biochemistry. 41, 13902-13914.
Dubacq C, Guérois R, Courbeyrette R, Kitagawa K, Mann C. (2002). Sgt1p contributes to cyclic AMP pathway activity and physically interacts with theadenylyl cyclase Cyr1p/Cdc35p in budding yeast. Eukaryot Cell. 1, 568-582.
Guérois R, Nielsen JE, Serrano L. (2002). Predicting changes in the stability of proteins and protein complexes: a study of more than 1000 mutations. J Mol Biol. 320, 369-387. Guérois R, Mendes J, Serrano L. (2002). Energy estimation in protein design. Curr Opin Struct Biol. 12, 441-446.
Montaville P, Neumann JM, Russo-Marie F, Ochsenbein F, Sanson A. (2002). A new consensus sequence for phosphatidylserine recognition by annexins. J Biol Chem. 277, 24684-24693.
Ochsenbein F, Neumann JM, Guittet E, van Heijenoort C. (2002). Dynamical characterization of residual and non native structures in a partially folded protein by 15N-NMR relaxation using a model based on a distribution of correlation times. Protein Sci. 11, 957-964.
Ochsenbein F, Guérois R, Neumann JM, Sanson A, Guittet E, Van Heijenoort C. (2001). 15N NMR relaxation as a probe for helical intrinsic propensity : the case of the unfolded D2 domain of annexin I J Biomol NMR. 19, 3-18.
Guérois R, Serrano L. (2001). Protein design based on folding models. Curr Opin Struct Biol.11,101-6.
Guérois R, Serrano L. (2000). The SH3-fold family: experimental evidence and prediction of variations in the folding pathways. J Mol Biol. 304,967-82.
Beswick V, Guérois R, Cordier-Ochsenbein F, Coic YM, Tam HD, Tostain J, Noël JP, Sanson A, Neumann JM. (1999). Dodecylphosphocholine micelles as a membrane-like environment : new results from NMR relaxation and paramagnetic relaxation enhancement analysis Eur Biophys J. 28, 48-58.
Cordier-Ochsenbein F, Guérois R, Russo-Marie F, Neumann JM, Sanson A. (1998). Exploring the folding pathways of annexin I, a multidomain protein. II . Hierarchy in domain folding propensities may govern the folding process J Mol Biol. 279, 1177-1185.
Cordier-Ochsenbein F, Guérois R, Baleux F, Huynh-Dinh T, Lirsac PN, Russo-Marie F, Neumann JM, Sanson A. (1998). Exploring the folding pathways of annexin I, a multidomain protein. I. Non-native structures stabilize the partially folded state of the isolated domain 2 of annexin I J Mol Biol. 279, 1163-1175.
Guérois R, Cordier-Ochsenbein F, Baleux F, Huynh-Dinh T, Neumann JM, Sanson A. (1998). A conformational equilibrium in a protein fragment caused by two consecutive capping boxes: 1H-, 13C-NMR, and mutational analysis. Protein Sci. 7, 1506-1515.
Agez, M., Lautrette, A., Mousson, F., Mann, C., and Ochsenbein, F. (2006). Structural biology of histone associated proteins, Chromatin: structure and function, Research Signpost, Kerala, India
Guérois R, Mendes J, Serrano L. (2004). Predicting the effect of mutations on protein stability in "Handbook of Protein Folding" Wiley/Verlag Chemie Ed. Brevet Français étendu à l’Europe et aux US.
Sanson A., Russo-Marie F., Neumann J.M., Cordier-Ochsenbein F., Guérois R. Structure chimique ayant une affinité pour un phospholipide, et composé de marquage, trousse de diagnostic, et médicament comprenant cette structure. N°98-12366 au nom du CEA et Université Paris VI. (1998).
Brevet Français : Sanson A., Ochsenbein F. Peptides ayant une affinité pour un phospholipide et utilisations. N° 02 08202 au nom du CEA et de l’Université Paris VI. (2002).
Brevet Français : Sanson A., Ochsenbein F., Dollé F. Peptides marqués ayant une affinité pour un phospholipide et utilisations. N° 0208204 au nom du CEA et de l’Université Paris VI. (2002).
