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Transporteurs de métaux - mécanisme et sélectivité

Patrice Catty, chercheur CEA
Martine Cuillel, chercheur Inserm
Elisabeth Mintz, chercheur CEA
Roger Miras, technicien supérieur CEA
 
Thématiques de recherche
 
Nous nous consacrons depuis plusieurs années à l'étude de transporteurs membranaires de métaux de transition, transporteurs appartenant à la famille des ATPases de type P. Les ATPases de type P sont des protéines membranaires qui transportent des métaux contre leur gradient de concentration en utilisant l'énergie fournie par l'hydrolyse de l'ATP (Figure 1).

 
Figure 1 : Au sein de l'ATPase de type P, le transport de l'ion, dans le sens opposé au gradient de concentration, est couplé à l'hydrolyse d'une molécule d'ATP. L'ATPase de type P est phosphorylée de manière transitoire au cours du transport.

Spécialisées dans le transport de Cu(I), Ag(I), Cd(II), Co(II), Pb(II) ou Zn(II), les ATPases de type PIB (Figure 2) participent avec d'autres transporteurs au maintien dans la cellule d'une concentration non toxique de ces métaux.



Figure 2 : Organisation structurale des ATPases de type P. Les ATPases possèdent un domaine catalytique constitué des domaines A (actuator), P (phosphorylation) et N (liaison du nucléotide). Elles sont ancrées dans la membrane par un domaine membranaire de taille variable (6-12 hélices α). Une classification des ATPases de type P a été proposé par Palmgren and Axelsen (1998) qui rend compte de la sélectivité ionique de ces transporteurs. Les ATPases de transport des métaux lourds possède à la différence des autres ATPases de type P 1 à 6 domaines cytoplasmiques N-terminaux de liaison des métaux (MBD).

Nous étudions quatre protéines de cette famille, impliquées dans le transport de Cd(II), Co(II) et Cu(I) au travers des membranes cellulaires.

CadA, l'ATPase-Cd(II) de Listeria monocytogenes, considérée comme la protéine modèle du type PIB
CoaT, l'ATPase-Co(II) de Synechocystis PCC6803, essentielle à la survie de la bactérie en milieu contaminé en cobalt
Ccc2, l'ATPase-Cu(I) de Saccharomyces cerevisiae, modèle des ATPases-Cu(I) humaines
• En collaboration avec le laboratoire iRTSV/PCV (CEA-Grenoble), nous travaillons aussi sur PAA1, une ATPase-Cu(I) de l'enveloppe du chloroplaste

Un résumé des bienfaits et méfaits des métaux auxquels nous nous intéressons suit. Quelques soient leurs effets sur le Vivant, Cd(II), Co(II) et Cu(I) ont en commun des propriétés chimiques qui les rendent capables de liaisons covalentes avec les atomes de soufre (cystéines et méthionines) et les atomes d'azote des histidines.

Le cadmium constitue l'un des principaux polluants environnementaux d'origine anthropogénique. Au niveau cellulaire, le cadmium est connu pour provoquer des lésions de l'ADN et inhiber certains systèmes de réparation du matériel génétique. Sa toxicité se manifeste aussi par une perturbation de l'homéostasie de certains métaux physiologiques tels que le calcium ainsi que par l'inhibition de l'activité de certaines enzymes. Enfin, le cadmium peut de manière indirecte générer un stress oxydant au sein de la cellule. La réponse du vivant aux effets cytotoxiques du cadmium fait intervenir trois types complémentaires de réponses cellulaires : la complexation, la séquestration et l'efflux du métal. La complexation implique généralement de petites protéines cytoplasmiques de type glutathion ou phytochelatine qui par leur propriétés chimiques lient le cadmium pour réduire sa réactivité chimique. La séquestration consiste en un isolement du métal au sein d'un compartiment donné de la cellule. L'efflux de cadmium est quant à lui essentiellement assuré par des ATPases de type PIB capable d'expulser le Cd(II) vers le milieu extérieur permettant ainsi la survie des microorganismes dans des milieux pollués.

Connu pour être associé à la vitamine B12, le cobalt est aussi le cofacteur de certaines enzymes bactériennes et humaines. Il peut être toxique chez l'homme où il est classé comme potentiellement cancérigène. A l'état de traces dans les milieux naturels, le cobalt peut se concentrer près de mille fois dans les milieux pollués. Il est tentant dans ces conditions de relier la prolifération de cyanobactéries dans les mares ou les rivières polluées à la présence d'ATPases dont CoaT est pris comme modèle. Ces ATPases très peu étudiées jusqu'à présent n'existent que dans un petit nombre d'espèces bactériennes dont les cyanobactéries, M. tuberculosis et certains pathogènes responsables d'infections nosocomiales. Ces ATPases seraient indispensables à leur survie en milieu hostile (on rappelle que de nombreux métaux sont connus et utilisés en milieu hospitalier pour leur activité bactéricide). L'étude de CoaT est menée dans le but d'obtenir une connaissance suffisamment précise du mécanisme de transport de Co(II) pour envisager de trouver un inhibiteur spécifique de la protéine.

Le cuivre est un métal essentiel à la vie de la cellule car ses propriétés redox et le couple Cu(I)/Cu(II) en font un cofacteur de nombreuses réactions enzymatiques chez tous les organismes vivants. Chez les mammifères, il existe deux ATPases à Cu(I) et deux maladies génétiques sévères associées à des mutations de leurs gènes, les maladies de Menkes et de Wilson. La levure possède une ATPase-Cu(I) qui sert de modèle pour l'étude des ATPases humaines. Chez les eucaryotes, les ATPases-Cu(I) situées dans les membranes de l'appareil de Golgi approvisionnent en cuivre certaines protéines de la voie sécrétoire. En cas d'envahissement de la cellule par le cuivre, des vésicules migrant vers la membrane plasmique déplacent ces ATPases, assurant ainsi la détoxication de la cellule. C'est par cette migration de vésicules vers la membrane plasmique que se produit l'assimilation du cuivre par l'intestin et la détoxication du cuivre dans le foie.
 
Site de transport des métaux des ATPases de type PIB , déterminant principal de la sélectivité ionique du transporteur
 
En nous inspirant des travaux réalisés sur l'ATPase-Ca(II) du réticulum sarcoplasmique (Figure 3), la mieux connue des ATPases de type P, nous cherchons à comprendre comment un métal de transition traverse la membrane au travers de la protéine.



Figure 3 : Images des trois structures tridimensionnelles d'ATPases de type P résolues à ce jour. De gauche à droite: ATPase-Ca2+ SERCA1a, ATPase-Na+/K+, ATPase-H+.

Alliant, biologie moléculaire, expression hétérologue et analyse fonctionnelle par des méthodes biochimiques [Bal et al., 2001 ; Bal et al., 2003), nos travaux ont mis en évidence le rôle essentiel et distinct de deux cystéines de la 6ème hélice membranaire de Ccc2 et CadA, et précisé les acides aminés des sites de transport de Cd(II) [Lowe et al., 2004 ; Wu et al., 2004 ; Wu et al., 2006a]. Ces travaux se poursuivent avec notamment sur CadA le développement d'un volet structural en collaboration avec le laboratoire de Thomas Sorensen à Oxford (UK).
 
Régulation de l'activité des ATPases-Cu(I) par phosphorylation
 
Une des particularités des ATPases-Cu(I) d'eucaryotes réside dans leur régulation par des kinases et phosphatases, protéines qui en alternant phosphorylation et déphosphorylation de certains acides aminés de l'ATPase-Cu(I) modulent la vitesse du cycle de transport du Cu(I). Nous étudions le rôle de sérines susceptibles d'être des sites d'action de kinases et phosphatases dans le fonctionnement de Ccc2 pour préciser les régulations susceptibles d'intervenir dans la cellule. Ce travail est réalisé en collaboration avec le laboratoire du Professeur A. Vieyra à Rio de Janeiro [Valverde et al., 2008 ; Valverde et al., 2010].
 
Sélectivité et détoxication
 
Chacune des protéines membranaires que nous étudions est spécifique de l'ion qu'elle transporte ; cette spécificité est plus ou moins stricte, par exemple, CadA peut transporter du Zn(II) et Ccc2, de l'Ag(I). Cependant, CadA ne transporte ni Co(II) ni Cu(I). Si le déterminant principal de la sélectivité ionique des ATPases de type PIB est le site de transport membranaire, on trouve sur la plupart de ces transporteurs, un second domaine d'interaction avec les métaux situé à l'extrémité N-terminale de la protéine. Ce domaine possède une structure de type ferredoxine et une séquence consensus Cys-x-x-Cys (Figure 4). Dans le cytosol, de petites protéines appelées métallochaperonnes, telle Atx1 chez la levure, fixent le Cu(I) par la même séquence consensus. Les chaperonnes et les domaines N-terminaux des ATPases forment une famille de protéines ayant le même repliement et le même motif de liaison des métaux lourds (Figure 4); cependant, elles fixent selon les cas, Cu(I), Cd(II), Zn(II) ou Hg(II). Nous nous intéressons à ces domaines tant d'un point de vue structural que fonctionnel et en particulier au rôle qu'ils peuvent jouer dans la sélectivité du transporteur pour les métaux [Morin et al., 2005 ; Banci et al., 2006 ; Miras et al., 2008 ; Poger et al., 2008 ; Morin et al., 2009].



Figure 4 : Structure des domaines N-terminaux de liaison des métaux (MBD) de trois ATPases de type PIB. CadA, ATPase-Cd(II) de L. monocytogenes, ZntA, ATPase-Zn(II) d'E. coli, CopA, ATPase-Cu(I) de B. subtilis. En jaune les acides aminés impliqués dans la coordination du métal. En bleu, région hydrophobe conservée dans les trois domaines.
 
Techniques
 
Biologie moléculaire - expression hétérologue dans divers systèmes (bactéries, levures, cellules d'insectes) - culture cellulaire - génétique de la levure - purification de protéines - biochimie - spectroscopies d'absorption, fluorescence, dichroïsme circulaire, diffusion de lumière - immunofluorescence - PCR quantitative.
 
Publications
 
Li S, Clémençon B, Catty P, Brandolin G, Schlattner U and Rousseau D
Yeast-based production and purification of HIS-tagged human ATAD3A, A specific target of S100B.
Protein Expression and Purification, 2012, 83(2): 211-216

Catty P, Boutigny S, Miras R, Joyard J, Rolland N and Seigneurin-Berny D
Biochemical characterization of AtHMA6/PAA1, a chloroplast envelope Cu(I)-ATPase.
Journal of Biological Chemistry, 2011, 286(42): 36188–36197

Gardarin A, Chedin S, Lagniel G, Aude JC, Godat E, Catty P and Labarre J
Endoplasmic reticulum is a major target of cadmium toxicity in yeast.
Molecular Microbiology, 2010, 76(4): 1034-1048

Valverde RH, Britto-Borges T, Lowe J, Einicker-Lamas M, Mintz E, Cuillel M and Vieyra A
Two serine residues control sequential steps during catalysis of the yeast copper ATPase through different mechanisms that involve kinase-mediated phosphorylations.
Journal of Biological Chemistry, 2010, 286(9): 6879-6889

Cuillel M
The dual personality of ionic copper in biology.
Journal of Inclusion Phenomena and Macrocyclic Chemistry, 2009, 65: 165-170

Morin I, Gudin S, Mintz E and Cuillel M
Dissecting the role of the N-terminal metal-binding domains in activating the yeast copper ATPase in vivo.
FEBS Journal, 2009, 276(16): 4483-4495

Miras R, Morin I, Jacquin O, Cuillel M, Guillain F and Mintz E
Interplay between glutathione, Atx1 and copper. 1. Copper(I) glutathionate induced dimerization of Atx1.
Journal of Biological Inorganic Chemistry, 2008, 13(2): 195-205

Poger D, Fillaux C, Miras R, Crouzy S, Delangle P, Mintz E, Den Auwer C and Ferrand M
Interplay between glutathione, Atx1 and copper: X-ray absorption spectroscopy determination of Cu(I) environment in an Atx1 dimer.
Journal of Biological Inorganic Chemistry, 2008, 13(8): 1239-1248

Valverde RHF, Morin I, Lowe J, Mintz E, Cuillel M and Vieyra A
Cyclic AMP-dependent protein kinase controls energy interconversion during the catalytic cycle of the yeast copper-ATPase.
FEBS Letters, 2008, 582(6): 891-895

Banci L, Bertini I, Ciofi-Baffoni S, Su XC, Miras R, Bal N, Mintz E, Catty P, Shokes JE and Scott RA
Structural basis for metal binding specificity: The N-terminal cadmium binding domain of the P1-type ATPase CadA.
Journal of Molecular Biology, 2006, 356: 638-650

Wu CC, Gardarin A, Catty P, Guillain F and Mintz E
CadA, the Cd2+-ATPase from Listeria monocytogenes, can use Cd2+ as co-substrate.
Biochimie, 2006, 88: 1687-1692

Wu CC, Gardarin A, Martel A, Mintz E, Guillain F and Catty P
The cadmium transport sites of CadA, the Cd
2+-ATPase from Listeria monocytogenes.
Journal of Biological Chemistry, 2006, 281: 29533-29541

Morin I, Cuillel M, Lowe J, Crouzy S, Guillain F and Mintz E
Cd
2+- or Hg2+-binding proteins can replace the Cu+-chaperone Atx1 in delivering Cu+ to the secretory pathway in yeast.
FEBS Letters, 2005, 579: 1117-1123

Lowe J, Vieyra A, Catty P, Guillain F, Mintz E and Cuillel M
A mutational study in the transmembrane domain of Ccc2p, the yeast Cu(I)-ATPase, shows different roles for each Cys-Pro-Cys cysteine.
Journal of Biological Chemistry, 2004, 279: 25986-25994

Wu CC, Bal N, Pérard J, Lowe J, Boscheron C, Mintz E and Catty P
A cloned prokaryotic Cd
2+ P-type ATPase increases yeast sensitivity to Cd2+.
Biochem. Biophys. Res. Commun., 2004, 324: 1034-1040

Bal N, Wu CC, Catty P, Guillain F and Mintz E
Cd
2+ and the N-terminal metal-binding domain protect the putative membranous CPC motif of the Cd2+-ATPase from Listeria monocytogenes.
Biochemical Journal, 2003, 369: 681-685

Bal N, Mintz E, Guillain F and Catty P
A possible regulatory role for the metal-binding domain of CadA, the Listeria monocytogenes Cd
2+-ATPase.
FEBS Letters, 2001, 506: 249-252

Miras R, Cuillel M, Catty P, Guillain F and Mintz E
Purification of heterologous sarcoplasmic reticulum Ca
2+-ATPase Serca1a allowing phosphoenzyme and Ca2+-affinity measurements.
Protein Expression and Purification, 2001, 22(2): 299-306
 
Revues et chapitres d'ouvrages
 
Frelon S, Carriere M, Floriani M, Delangle P and Mintz E
Comportement des espèces chimiques dans la biosphère : spéciation, biodisponibilité, transferts. Spéciation et Biodisponibilité, "Spéciation et chélation dans le vivant" in Toxicologie Nucléaire Environnementale et Humaine, 2009, Lavoisier pp 27-46

Catty P, Verret F, Lecomte-Pradines C and Forestier C
Comportement des espèces chimiques dans la biosphère : spéciation, biodisponibilité, transferts. Flux biogéeochimique et acteurs moléculaires du transport dans le vivant, "Transport membranaire des métaux et métalloïdes" in Toxicologie Nucléaire Environnementale et Humaine, 2009, Lavoisier pp 63-82
 
Thèses
 
Nathalie Bal.
Étude fonctionnelle de CadA, l'ATPase-cadmium de Listeria monocytogenes.
Thèse de l'Université Joseph Fourier soutenue le 13 décembre 2002.
[Résumé]

ChenChou Wu.
Identification et caractérisation des sites de transport de CadA, l'ATPase-cadmium de Listeria monocytogenes.
Thèse de l'Université Joseph Fourier soutenue le 17 janvier 2005.
[Résumé] - [Thèse en ligne]

Isabelle Morin.
Convoyage et transfert du Cu (I) à l'appareil de Golgi dans Saccharomyces cerevisiae. Rôle de la métallo-chaperonne Atx1 et de l'ATPase Ccc2.
Thèse de l'Université Joseph Fourier soutenue le 29 novembre 2005.
[Résumé]

Aurélie Gardarin.
Cadmium, ATPase-P, levure : du transport à la toxicité.
Thèse de l'Université Joseph Fourier soutenue le 19 décembre 2007.
[Résumé]

Simon Gudin.
Étude de l’ATPase cuivre eucaryote Ccc2 de Saccharomyces cerevisiae. De la localisation à la fonction.
Thèse de l'Université Joseph Fourier soutenue le 23 novembre 2008.
[Résumé] [Thèse en ligne]

Jennifer Lowe
Caractérisation des domaines transmembranaires essentiels au transport de Cu(I) par l'ATPase-Cu(I) de S. cerevisiae. Pertinence pour les études de l'homéostasie du cuivre chez les eucaryotes.
Thèse de l'Université Joseph Fourier soutenue le 23 août 2002 en cotutelle avec l'Université Fédérale de Rio de Janeiro.
[Résumé]

Rafael Valverde
Communication intramoléculaire de longue distance entre les domaines de phosphorylation régulatrice et catalytique de Ccc2, une ATPase-Cu(I) de la levure : le double rôle de la protéine kinase A (PKA).
Thèse de l'Université Joseph Fourier soutenue en 2007