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Biosynthèse de centres métalliques



Responsable
 
Dr. Sandrine Ollagnier-de Choudens
Chargée de Recherche au CNRS
iRTSV/LCBM
CEA Grenoble
17 rue des Martyrs
38 054 Grenoble cedex 09
Tel. : (33) 4 38 78 91 15
Fax : (33) 4 38 78 91 24
 
La biosynthèse de centres métalliques
 
Les centres fer-soufre sont des cofacteurs essentiels d'enzymes qui interviennent dans la quasi-totalité des réactions cellulaires (réactions d'oxydo-réduction, de catalyse, régulation de l'expression des gènes, rôle structural…). Si les systèmes enzymatiques impliqués dans les mécanismes de formation des centres fer-soufre en biologie sont aujourd'hui identifiés, les mécanismes moléculaires conduisant à la formation d'un centre Fe-S mature n'ont pas encore été élucidés.

On distingue chez Escherichia coli deux machineries multiprotéiques impliquées le processus de biogénèse des centres Fe-S. La première, ISC (Iron-Sulfur-Cluster), est "LA" machinerie générale d'assemblage des centres fer-soufre. C'est elle qui fonctionne dans des conditions normales de croissance. La deuxième, SUF (SulFUr), est plus spécifiquement impliquée dans l'assemblage dans des conditions de carence en fer et de stress oxydant. Ces deux systèmes interviennent dans l'assemblage correct des atomes de fer et de soufre, via des réactions, complexes, de mobilisation du fer, du soufre, de transfert de centres fer-soufre ainsi que de transfert d'électrons (Figure 1). Notre objectif est d'atteindre une connaissance intégrée du rôle et de l'importance des systèmes ISC et SUF dans la physiologie d'Escherichia coli par des approches de biochimie, d'enzymologie, de biologie structurale et de génétique moléculaire.


Figure 1 : Machineries d’assemblage des clusters (Fe-S)


Nos travaux sur la biosynthèse des centres fer-soufre, démarrés en 2001, concernaient uniquement l'opéron isc. Un résultat important du laboratoire fut la caractérisation du produit du gène iscA comme étant une protéine échaffaudage ou «scaffold», définissant un nouveau type de protéine : protéine capable de préformer un centre fer-soufre au sein de sa chaîne polypeptidique et de le transférer efficacement à des apoprotéines cibles. Depuis 2003, nous travaillons essentiellement sur le système SUF en collaboration étroite avec F. Barras (CNRS, Marseille) qui nous apporte ses compétences en microbiologie et génétique microbienne. Dans ce cadre nous avons ainsi pu caractériser de manière structurale et fonctionnelle trois protéines : SufA, SufS et SufE (Figure 2). La première présente des propriétés similaires à celles de IscA. Les protéines SufS et SufE forment quant à elles un complexe doté d'une importante activité cystéine désulfurase, à l'origine du soufre dans la formation des clusters. Ce dernier résultat nous a permis de mettre en évidence une nouvelle classe de cystéine désulfurase à 2 composants à laquelle est venue se rajouter les protéines CsdA-CsdE, également caractérisées au laboratoire. Plus récemment nos recherches ont permis de montrer un transfert de soufre direct de SufE à SufA et aussi de SufE à SufB, le soufre étant « stocké » au sein de ces protéines sous forme d'entités persulfures (cys-S-SH) ou polysulfures (cys-S-(S)n-SH) au niveau de résidus cystéines conservées (Figure 2). Ces multiples transferts de soufre entre protéines (réaction de transpersulfuration) sont tout à fait intéressants et nous permettent de progresser dans la connaissance du mécanisme au niveau moléculaire de la biosynthèse des centres fer-soufre.
Récemment, nos recherches ont également permis de mettre en évidence un donneur potentiel de fer physiologique : la protéine CyaY, homologue de la frataxine chez les eucaryotes.



Figure 2 : Bilan des connaissances du système suf et nos perspectives de travail (indiquées par « ? »)

Aujourd'hui nos efforts portent sur les objectifs suivants :

1- déterminer le rôle du complexe SufBCD possédant une activité ATPase (rôle de chacune des protéines) ;

2- isoler in vivo la protéine SufA avec son cofacteur métallique (FeS) ; caractérisation structurale et fonctionnelle. Comparaison aux résultats obtenus in vitro ;

3- caractériser au niveau moléculaire le mécanisme d'assemblage des centres fer-soufre dans les protéines «scaffold» avec comme modèle la protéine SufA (qui du fer ou du soufre incorpore le site actif en premier ?) et les mécanismes de transfert de ces clusters aux apo-protéines cibles ;

4- définir le répertoire des apoprotéines dont l'activité biologique dépend in vivo, directement ou indirectement, du fonctionnement des systèmes ISC et SUF.
 
Thèse soutenue
 
Carine Rousset.
Étude structurale et fonctionnelle de la Quinolinate Synthase : une protéine fer-soufre cible d'agents antibactériens.
[Résumé] [Thèse en ligne]

Maïté Sendra.
Étude mécanistique de la biosynthèse des centres [Fe-S] chez Escherichia coli : Quel rôle pour la protéine SufA ?
[Résumé] [Thèse en ligne]
 
Publications
 

Wollers S, Layer G, Garcia-Serres R, Signor L, Clemancey M, Latour JM, Fontecave M and Ollagnier de Choudens S
Iron-sulfur (Fe-S) cluster assembly: The SufBCD complex is a new type of Fe-S scaffold with a flavin redox cofactor.
Journal of Biological Chemistry, 2010, 285(30): 23331-23431

Gupta V, Sendra M, Naik SG, Chahal HK, Huynh BH, Outten FW, Fontecave M and Ollagnier de Choudens S
Native Escherichia coli SufA, coexpressed with SufBCDSE, purifies as a [2Fe-2S] protein and acts as an Fe-S transporter to Fe-S target enzymes.
Journal of the American Chemical Society, 2009, 131(17): 6149-6153

Chandor-Proust A, Berteau O, Douki T, Gasparutto D, Ollagnier de Choudens S, Fontecave M and Atta M
DNA repair and free radicals: New insights into the mechanism of spore photoproduct lyase revealed by single amino acid substitution.
Journal of Biological Chemistry, 2008, 283(52): 36361-36368

Fontecave M and Ollagnier-de-Choudens S
Iron-sulfur cluster biosynthesis in bacteria: Mechanisms of cluster assembly and transfer.
Archives of Biochemistry and Biophysics, 2008, 474(2): 226-237

Rousset C, Fontecave M and Ollagnier de Choudens S
The [4Fe-4S] cluster of quinolinate synthase from Escherichia coli: Investigation of cluster ligands.
FEBS Letters, 2008, 582(19): 2937-2944

Layer G, Gaddam SA, Ayala-Castro CN, Ollagnier-de Choudens S, Lascoux D, Fontecave M and Outten FW
SufE transfers sulfur from SufS to SufB for iron-sulfur cluster assembly.
Journal of Biological Chemistry, 2007, 282(18): 13342-13350

Loiseau L, Gerez C, Bekker M, Ollagnier-de Choudens S, Py B, Sanakis Y, Teixeira de Mattos J, Fontecave M and Barras F
ErpA, an iron sulfur (Fe S) protein of the A-type essential for respiratory metabolism in Escherichia coli.
Proceedings of the National Academy of Sciences USA, 2007, 104(34): 13626-13631

Sendra M, Ollagnier de Choudens S, Lascoux D, Sanakis Y and Fontecave M
The SUF iron-sulfur cluster biosynthetic machinery: Sulfur transfer from the SUFS-SUFE complex to SUFA.
FEBS Letters, 2007, 581(7): 1362-1368

Layer G, Ollagnier de Choudens S, Sanakis Y and Fontecave M
Iron-sulfur cluster biosynthesis: Characterization of Escherchia coli CyaY as an iron donor for the assembly of [2Fe-2S] clusters in the scaffold IscU.
Journal of Biological Chemistry, 2006, 281(24): 16256-16263

Fontecave M, Ollagnier-de Choudens S, Py B and Barras F
Mechanisms of iron-sulfur cluster assembly: The SUF machinery.
Journal of Biological Inorganic Chemistry, 2005, 10(7): 713-721

Loiseau L, Ollagnier-de Choudens S, Lascoux D, Forest E, Fontecave M and Barras F
Analysis of the heteromeric CsdA-CsdE cysteine desulfurase, assisting Fe-S cluster biogenesis in Escherichia coli.
Journal of Biological Chemistry, 2005, 280(29): 26760-26769

Ollagnier-de Choudens S, Sanakis Y and Fontecave M
SufA/IscA: reactivity studies of a class of scaffold proteins involved in Fe-S cluster assembly.
Journal of Biological Inorganic Chemistry, 2004, 9(7): 828-838

Loiseau L, Ollagnier-de Choudens S, Nachin L, Fontecave M and Barras F
Biogenesis of Fe-S cluster by the bacterial Suf system: SufS and SufE form a new type of cysteine desulfurase.
Journal of Biological Chemistry, 2003, 278(40): 38352-38359

Ollagnier-de Choudens S, Lascoux D, Loiseau L, Barras F, Forest E, and Fontecave M
Mechanistic studies of the SufS-SufE cysteine desulfurase: Evidence for sulfur transfer from SufS to SufE.
FEBS Letters, 2003, 555(2): 263-267

Ollagnier-de Choudens S, Nachin L, Sanakis Y, Loiseau L, Barras F and Fontecave M
SufA from Erwinia chrysanthemi. Characterization of a scaffold protein required for iron-sulfur cluster assembly.
Journal of Biological Chemistry, 2003, 278(20): 17993-18001

Ollagnier-de Choudens S, Mattioli T, Takahashi Y and Fontecave M
Iron-sulfur cluster assembly: Characterization of IscA and evidence for a specific and functional complex with ferredoxin.
Journal of Biological Chemistry, 2001, 276(25): 22604-22607

Biosynthèse du NAD. Une cible fer-soufre pour antibactériens
 
Nous avons réussi à isoler en 2005, sous forme active, une enzyme essentielle de la biosynthèse du NAD, la quinolinate synthase. Il s'agit d'une protéine comportant un centre (4Fe-4S) essentiel à l'activité qui catalyse une réaction de condensation intéressante (Figure 3 : Une étape de la voie de biosynthèse du NAD). Cette enzyme est absente chez l'homme, où l'acide quinolinique vient de la dégradation du tryptophane, ce qui en fait une cible de choix pour des agents antibactériens sélectifs. Chez certains microorganismes comme Mycobacterium tuberculosis, responsable de la tuberculose, l'inactivation du gène correspondant a des effets considérables sur la croissance et la virulence du pathogène.



Figure 3 : Réaction catalysée par la Quinolate synthase.

Nous disposons au laboratoire de la quinolinate synthase d'Escherichia coli et de Mycobacterium tuberculosis sous une forme purifiée et active (test enzymatique par HPLC). Nous nous proposons de mieux caractériser la protéine de ces deux organismes :
1- sur le plan structural par cristallographie RX (en collaboration avec M Rizzi, Italie),
2- chercher des inhibiteurs spécifiques de l'enzyme (synthèse d'analogues de substrats et criblage de chimiothèques) (collaboration Olivier Hamelin),
3- Déterminer les ligands du centre (4Fe-4S) encore inconnus.

Nous étudions depuis peu de façon structurale et fonctionnelle la quinolinate synthase d'Arabidopsis thaliana (en collaboration avec M et E Pilon-Smith, Colorado, USA). L'étude de cette protéine est fascinante puisqu'elle possède en plus du domaine responsable de l'activité quinolinate synthase (et contenant le centre (4Fe-4S)) un domaine N-terminal responsable de l'apport de soufre pour la formation du centre (4Fe-4S) lui-même ! Ceci nous intéresse dans le cadre de la biosynthèse des centres fer-soufre (voir Biosynthèse des centres Fe-S) puisque dans ce cas on aurait une protéine capable de former/réparer elle-même son centre (Fe-S) sans nécessité de toute une machinerie protéique complexe.
 
Sélection de publications
 
Murthy UMN, Ollagnier-de-Choudens S, Sanakis Y, Abdel-Ghany SE, Rousset C, Ye H, Fontecave M, Pilon-Smits EA and Pilon M
Characterization of Arabidopsis thaliana SuFE2 and SuFE3: Functions in chloroplast iron-sulfur cluster assembly and NAD synthesis.
Journal of Biological Chemistry, 2007, 282(25): 18254-18264

Ollagnier-de Choudens S, Loiseau L, Sanakis Y, Barras F and Fontecave M
Quinolinate synthetase, an iron-sulfur enzyme in NAD biosynthesis.
FEBS Letters, 2005, 579(17): 3737-3743
 
Impact des métaux toxiques sur la biosynthèse des centres fer-soufre et sur le métabolisme du fer
 
Ce travail est une application à l'étude de la biosynthèse des centres fer-soufre chez Escherichia coli. Il a été initié dans le cadre du Programme de Toxicologie Nucléaire du CEA en collaboration avec le laboratoire du Pr. F. Barras (CNRS Marseille). L'idée du projet est que les toxiques métalliques tels que le cobalt (Co) ou le cadmium (Cd) exercent leurs effets toxiques en partie au cours de la biosynthèse/réparation des clusters FeS en entrant en compétition avec le fer. (voir Dr. Catherine Gerez).
 
Réparation de l'ADN par la Spore Photoproduct Lyase
 
Les spores bactériennes (B. subtilis) sont particulièrement résistantes à toutes sortes de stress. Sous irradiation UV leur ADN est sélectivement modifié par production de dimères de thymine appelés spore photoproduits (SP) et ces bactéries possèdent un système de réparation très efficace, la spore photoproduit lyase (SPL), enzyme que nous étudions de façon structurale et fonctionnelle (voir Dr. Mohamed Atta).
 
Biosynthèse de molécules soufrées et formation de liaisons C-S